分子クローニング・制限酵素消化
シングル・ダブル消化マスターミックス
グリセロール ≤ 5% スター活性QC

制限酵素反応液計算機|ダブルダイジェスト

DNA量、反応液量、制限酵素の数と添加量を入力して、消化反応液の組成を計算します。

制限酵素反応の設定

単一消化またはダブル消化の反応液を計算し、グリセロール濃度とスター活性の目安を確認します。
1つ目の制限酵素65°Cで20分
2つ目の制限酵素加熱失活なし(カラム精製で除去)

分注用レシピ

成分容量
ヌクレアーゼフリー水38.0 µL
10X 消化 バッファー5.0 µL
DNA (1000 ng)5.0 µL
EcoRI-HF1.0 µL
BamHI-HF1.0 µL
合計 反応 容量50.0 µL
グリセロール濃度:
2.0%(目安:≤ 5%)
計算上のグリセロール濃度は低い範囲です。スター活性の有無は酵素と条件によります。
反応時間の目安:

反応時間:37°Cで30〜60分(HF酵素では15分の製品もあります。製品説明書を確認してください。)

反応液量の計算方法

制限酵素は4〜8 bpの二本鎖回文配列を特異的に認識し、リン酸ジエステル結合を加水分解します。1ユニット(1 U)は、50 µLの反応系で37℃、60分間に1 µgのλ DNAを完全に切断する酵素量と定義されます。

酵素量の初期目安

DNA 1 µgあたり5〜10 Uは、酵素量を見積もる際に使われることがある出発点です。ユニットの定義や推奨量は製品ごとに異なり、塩やエタノールの残留が反応に影響する場合もあります。酵素メーカーの説明書を確認してください。この計算機は消化完了率を予測しません。

ダブル消化共通バッファーの選定

複数の酵素に対応する反応バッファーを使うと、ダブル消化の調製を簡略化できる場合があります。ただし、バッファーの適合性と各酵素の活性は製品によって異なります。メーカーの適合性情報を確認し、必要に応じて段階消化や精製を検討してください。

アガロースゲル電気泳動バンドシミュレーション

アガロースゲル(1.0%)における制限酵素処理サンプルの泳動パターン比較:未切断プラスミドは超らせん構造により見かけの泳動度が変化し、シングル切断で正確な直鎖状サイズを示し、ダブル切断で目的インサートが切り出されます。

Cathode (−) Wells1.0% Agarose • 100 V • 45 minAnode (+)
レーン1:1 kb DNAマーカーレーン2:未消化プラスミドレーン3:単一酵素消化レーン4:二重消化10 kb8 kb6 kb5 kb4 kb3 kb2 kb1.5 kb1.0 kb0.5 kbニック入り開環状スーパーコイル(主バンド)直鎖化(5.4 kb)模式図では未消化バンドを省略ベクターバックボーン(4.5 kb)切り出されたインサート(900 bp)
未消化プラスミドの構造超らせん(高速泳動)と開環状(低速泳動)の複数バンドが出現します。
単一酵素消化による直鎖化空間構造が解消され、正確な分子量位置に単一バンドとして移動します。
二重消化で生じる断片短いバンド(900 bp)の蛍光強度が低いのは、DNA長に比例する正常な現象です。

制限酵素の認識配列と切断末端

制限酵素認識配列 (5′→3′)末端タイプ最適温度熱失活スター活性対策
EcoRI-HF®G▼AATTC5′突出末端 (AATT)37°C65°C、20分低め(HF製剤)
BamHI-HF®G▼GATCC5′突出末端 (GATC)37°C製品説明書で確認低め(グリセロール≤5%の場合)
HindIII-HF®A▼AGCTT5′突出末端 (AGCT)37°C80°C、20分低め
XhoIC▼TCGAG5′突出末端 (TCGA)37°C65°C, 20 min中程度(長時間反応では確認)
NdeICA▼TATG5′突出末端 (TA)37°C65°C, 20 min認識配列にATG開始コドンを含む
NotI-HF®GC▼GGCCGC5′突出末端 (GGCC)37°C65°C, 20 min8 bpの認識配列
SmaICCC▼GGG平滑末端25°C65°C、20分製品説明書で確認

反応温度、熱失活条件、スター活性の特性はメーカーや製品によって異なる場合があります。使用する酵素の最新説明書を確認してください。

💡 ヒント:使用する制限酵素を製品説明書の条件で熱失活できず、後続反応が残存酵素やバッファーに対応していない場合は、ライゲーション前のDNA精製を検討してください。酵素とライゲーション試薬の説明書を確認してください。

酵素・バッファー条件の確認

スター活性(Star Activity)とは、制限酵素の認識配列特異性が低下し、非標的部位を切断する現象です。主な原因:

過剰なグリセロール (> 5%)

酵素原液にはグリセロールが含まれることがあります。酵素液の添加量が多いと反応に影響する場合があるため、製品説明書に従って反応液を設計してください。

過剰なインキュベーション時間

長時間の反応では、酵素や条件によって非特異的切断が起こる可能性があります。推奨時間を超える場合は、製品説明書を確認してください。

低イオン強度 / 高pH

酵素に適合する反応バッファーと水を使い、メーカー推奨の条件に合わせてください。pHやMg²⁺濃度は酵素活性に影響します。

計算例

計算実例:クローニングベクターのダブル消化直鎖化 (EcoRI-HF + XhoI)

50 µL反応系で1.5 µgのpET-28aプラスミド(濃度 250 ng/µL)を方向性クローニング用に切断。

  • 1. ベクターDNA量:1500 ng / 250 ng/µL = 6.0 µL
  • 2. 10X rCutSmart Buffer: 50 µL / 10 = 5.0 µL
  • 3. EcoRI-HF (20 U/µL): 1.0 µL (20 U)
  • 4. XhoI (20 U/µL): 1.0 µL (20 U)
  • 5. ヌクレアーゼフリー水:50.0 − (6.0 + 5.0 + 1.0 + 1.0) = 37.0 µL
  • QC: 酵素量 = 2.0 µL / 50 µL = 4.0% → グリセロール濃度 2.0% (≤ 5% 基準適合)。

よくある質問

反応液の計算には何を入力しますか?

反応総量、DNA量、制限酵素の数や添加量など、使用する反応条件を入力します。

ダブルダイジェストにも対応していますか?

はい。複数の制限酵素を選択して反応液量を計算できます。

反応液の合計量はどのように確認しますか?

各成分の計算量と指定した反応総量を照らし合わせてください。

酵素やバッファーの条件はどこで確認しますか?

使用する酵素製品の説明書に記載された推奨バッファー、反応条件、添加量を確認してください。